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Transformação de Plantas
Seleção de tecido vegetal competente para propagação ou regeneração Método de transferência de gene Identificação de células transformadas por seleção Regeneração de plantas de células transformadas Plantas transgênicas analisadas para confirmar presença do transgene - herança e estabilidade Plantas transgênicas avaliadas para performance
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Transferindo genes para plantas
O processo de introdução de genes em plantas chama-se transformação genética O gene sendo transferido para a planta é chamado de transgene Plantas com modifiçações genética são denominadas de transformadas ou transgênicas Denominação geral = Organismos Geneticamente Modificados (OGM)
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Transferindo DNA para células de plantas
1. DNA pode ser transferido por meio biológico (Agrobacterium) ou físico (bombardeamento) 2. DNA deve cruzar várias barreiras 3. DNA deve se integrar ao cromossomo no núcleo da célula 4. Cada célula transformada é única 5. Número de células transformadas é mínimo transgene Célula Vegetal núcleo citoplasma membrana citoplasmática parede celular
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Cronologia da Transformação de Plantas
1907 Identificação de Agrobacterium tumefaciens como agente causal de galhas 1974 Descoberta de elemento extra-cromossomial ligado à indução de galhas 1975 Aquisição de habilidade oncogênica por transferência de plasmídeo 1977 Transferência e manutenção de T-DNA em células de plantas 1980 Uso de plasmídeo Ti para introdução de genes em plantas 1981 Transmissão Mendeliana de genes introduzidos por Ti 1983 Construção de genes marcadores quiméricos Engenharia de vetor Ti para introdução de genes sem oncogênese 1984 Regeneração de plantas resistentes à kanamicina com herança Mendeliana 1985 Estabelecimento de transformação e regeneração por disco foliar 1987 Transformação através de bombardeamento com micropartículas
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Transformação de Plantas
1. Agrobacterium tumefaciens como vetor método de escolha limitação de hospedeiro 2. Bombardeamento com micropartículas usado em Monocotiledôneas e Legumes versatilidade de tecido alvo 3. Protoplastos célula vegetal sem parede celular totipotência - similar a bactéria permeabilização reversa membrana PEG Eletroporação
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Agrobacterium tumefaciens
Bactéria de solo Gram-negativa, tipo bacilo Causa galha da coroa (“crown gall”): videira, maçã, etc Afeta mais dicotiledôneas e pouco monocotiledôneas Família Rhizobiaceae Outras espécies: Agrobacterium rhizogenes -raiz em cabeleira (“hairy root) Agrobacterium rubi - hospedeiros limitados Agrobacterium radiobacter - não tumorogênica (sem Ti)
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Agrobacterium Biovar: características fisiológicas, químicas e nutricionais Biovar I: A. tumefaciens, A. radiobacter e poucas A. rhizogenes Biovar II: maioria A. rhizogenes e A. rubi Biovar III: A. viti (A. tumefaciens)
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Agrobacterium Infecção natural - ferimentos
Quimiotactismo - fenóis, açúcares, amino ácidos Formação de tumores Expressão de genes da bactéria transferidos e integrados de forma estável ao genoma vegetal Capacidade tumorogênica - plasmídeo Ti = Ti = Tumor Inducing a 250 kpb Regiões do plasmídeo Ti importantes: região T-DNA - Transfer DNA região vir - genes de virulência
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Agrobacterium Região T-DNA Tamanho: de 12 a 24 kb
Limitada por seqüências repetidas diretas imperfeitas bordas direita (RB) e esquerda (LB) - delimitam T-DNA Contém genes de síntese de reguladores de crescimento (hormônios vegetais) e de opinas Transferem genes para direcionar metabolismo para manutenção da Agrobacterium
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Agrobacterium Região T-DNA Síntese de reguladores de crescimento
Auxina genes iaaM (tms1): triptofano 2-monooxigenase gene iaaH (tms2): indol-3-acetamida Citocinina gene tmr: isopentenil transferase adição de cadeia isopentenil a 5’-AMP adição de OH = transzeatina
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iaaM (tms1) iaaH (tms2) ipt (tmr)
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Agrobacterium Região T-DNA Síntese de opinas
compostos únicos e incomuns fonte de C e N para Agrobacterium favorece transferência conjugativa de Ti condensação de açúcares ou ácido orgânico + amino ácido arginina + piruvato = octopina arginina + a-ketoglutaraldeído = nopalina glutamato bicíclico = agropina Catálise de opinas no Ti, mas fora região T-DNA específico para a cepa indutora do tumor
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Agrobacterium Região vir
genes responsáveis pela síntese de enzimas da transferência e integração do T-DNA transporte do ssT-DNA-membranas e paredes proteção contra nucleases região de Kb 8 operons: virA, virB, virC, virD, virE, virF, virG e virH 25 genes virA, virF e virG - monocistrônicos outros –policistrônicos animação
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Agrobacterium Região vir sistema regulador positivo: virA e virG
regulam os outros genes vir VirA: expresso constitutivamente proteína de membrana interna - histidina kinase reconhece compostos fenólicos sob pH 5-5,8 auto-fosforilação e fosforilação de VirG VirG - fosforilado se torna ativo ativa sua própria transcrição ativa transcrição outros genes vir seqüência de 12 pb - vir box
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Agrobacterium Região vir
virC e virD - geração e processamento do T-DNA reconhecem borda direita do T-DNA virD1:- relaxamento da fita dupla (topoisomerase) virD2:- corte da fita simples (endonuclease) e formação de complexo-T com o ssT-DNA e direcionamento virC1 e virC2: complementam atividade de virD1 e virD2 virB e virE - formação de elementos estruturais de movimento do T-DNA virE2: proteína do tipo “single strand binding ptn) protegendo T-DNA de degradação por nucleases e direcionamento virB1 a virB11: formação de tubo de conjugação virH (ou pinF): responsável desintoxicação (tipo citocromo)
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Agrobacterium Região vir
mutações em virA, virB, virD e virG : eliminam formação de tumores mutações de virC , virE, virF e virH: restringem gama de hospedeiro animação
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Agrobacterium Região vir é suficiente para transferir qualquer T-DNA - reconhece bordas Gene indutores de tumores podem ser retirados e substituídos no T-DNA
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Geração de Linhagens de Agrobacterium Desarmadas Remoção de oncogenes
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Sistema de vetores de Agrobacterium para transformação A. Co-integrado B. Binário
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Plasmídeo Binário
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Cruzamento Triparental Agrobacterium e Escherichia com auxílio pRK2013 helper
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Agrobacterium Genoma seqüenciado C58: 5.674.062 bases
cromossoma circular: pb (59,4% G+C) ptn cromossoma linear: pb (59,3% G+C) ptn plasmídeo pAtC58: pb (57,3% G+C) ptn plasmídeo pTiC58: pb (56,7% G+C) ptn
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Bombardeamento com Micropartículas micropartículas cobertas com DNA construído, acelerados por explosão, introduzidos em células vegetais Vantagens: 1. transformação de Monocot e Legumes 2. simplificação nas construções 3. co-transformação com várias construções 4. ausência de falsos positivos 5. protocolos de transformação simplificados
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Transformação por Bombardeamento
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Transformação por Bombardeamento
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Métodos Alternativos 1. Fibra “Silicon Carbide”
- fibras penetram parede celular com DNA aderido - cristais únicos 0,6 x 10 a 80 mm - suspensões celulares - milho, aveia e tabaco - simples e flexível - domínio público 2. Eletroporação de tecidos intactos - expressão transiente em pólen de tabaco, base de folha de cereais, embriões de caupi - transformação estável em sementes - padronização de equipamento - capacitor
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3. Eletroforese. - embrião de cevada e orquídeas 4. Microinjeção
3. Eletroforese - embrião de cevada e orquídeas 4. Microinjeção - rotina para célula animais - utiliza micromanipulador - uso de protoplasto - vacúolo - oneroso, complexo e demorado
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Transformação de Plantas
Introdução de genes heterólogos Alteração da expressão gênica superexpressão promotor constitutivo ou induzível gene anti-senso ou senso - silenciamento Aplicações Melhoramento genético Plantas como biorreatores Estudo de função
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Tipos de genes 1. Genes estruturais codificam enzimas
2. Genes regulatórios codificam proteínas que controlam genes estruturais (fatores de transcrição) -> definem QUANDO, QUANTO e ONDE
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Gene Estrutural Regulatório R R R Promotor
Região Codificadora de Proteína Enzima Regulatório Gene Estrutural R R R
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Estratégias de Modificação de Rotas Metabólicas
INTRODUÇÃO DE GENE codificando enzima não existente ou não funcional ou pouco eficiente gene sentido oposto - ANTISENSO GENE -> ENEG gene com controle alterado (promotor)
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Reação em Rotas Metabólicas
X y u A B C D z E
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Gene em Senso e Antisenso
Promotor GENE AGCTTGCC Antisenso Promotor GGCAAGCT ENEG
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Rota Metabólica de Biossíntese
X y u A B C D z E Reação Normal Produtos D e E feitos
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Rota Metabólica de Biossíntese Introdução de novo gene
X y u D A B C z transformação W W E Introdução de gene w codificando enzima W Produtos D e W feitos
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Reação em Rotas Metabólicas Antisenso
transformação X B y u A C D z E Introdução de gene y anti-senso inibindo Y Produtos D e E não são feitos
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Reação em Rotas Metabólicas: Ex. resistência à herbicida
Y Z Amino Ácidos EPSPS Roundup inibe EPSPS Carência de Aminoácidos Planta morre Enzima fundamental para sintetizar um grupo de amino ácidos
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Forma da enzima que NÃO é inhibida por Roundup
Soja RoundupReady X Y Z Amino Ácidos EPSPS “Bypass” Metabólico Adicionando gene codificando EPSPS que permite as plantas fazer amino ácidos após aplicação de Roundup CP4-EPSPS Forma da enzima que NÃO é inhibida por Roundup
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