Expressão heteróloga das proteínas de fusão GST-Drg11 e His-Drg11

Apresentação em tema: "Expressão heteróloga das proteínas de fusão GST-Drg11 e His-Drg11"— Transcrição da apresentação:

1 Expressão heteróloga das proteínas de fusão GST-Drg11 e His-Drg11
na bactéria E. Coli

2 Introdução Este trabalho laboratorial foi realizado com o intuito de produzir, na bactéria E. Coli, a proteína Drg11 associada a dois “tags” diferentes: 6 Histidinas GST (Glutationa S-Transferase)

3 Drg11 É uma proteína de regulação de 30KDa que funciona como factor de transcrição. É importante no estabelecimento do circuito nociceptivo durante o desenvolvimento embrionário. Pode estar envolvido na organização dos neurónios.

4 Importância deste trabalho
A expressão heteróloga de proteínas é muito importante quando se pretende proceder ao estudo funcional das mesmas. Em primeiro lugar, torna-se necessária a produção e purificação da proteína e, finalmente, a obtenção do anticorpo que lhe corresponde.

5 As proteínas de fusão consistem na associação de duas proteínas (a Drg11 com um tag).
A utilização de tags possibilita a purificação da proteína de interesse, através da cromatografia de afinidade, por intermédio do uso de resinas com determinados constituintes que apresentam afinidade para esses tags. His-Drg11: resina com Níquel GST-Drg11: resina com glutationa

6 Os vectores de expressão utilizados são os plasmídeos:
PGEX – contém o cDNA da proteína de fusão GST-Drg11. PRSETA – contém o cDNA da proteína de fusão His-Drg11. Utilizam-se dois vectores diferentes porque as proteínas de fusão podem ter comportamentos diferentes nas culturas de bactérias seleccionadas.

7 E.Coli A estirpe de E.Coli utilizada foi a BL21.
A BL21 é uma estirpe geneticamente modificada, caracterizada pela inactivação de muitos dos genes que codificam as suas proteases. Assim, a probabilidade de ocorrer a proteólise das proteínas de interesse é menor.

8 Procedimentos PRSETA ( His-Drg11) PGEX (GST-Drg11)
Foram-nos fornecidos dois stocks de bactérias desta estirpe previamente submetidas a um processo de transformação com os dois plasmídeos recombinantes: PRSETA ( His-Drg11) PGEX (GST-Drg11)

9 PRSETA cDNA da Drg11 His Drg11 1KDa KDa = 31KDa

10 PGEX cDNA da Drg11 GST Drg11 26KDa KDa = 56KDa

11 Protocolo experimental
2 stocks de bactérias submetidas a um processo de transformação Repicou-se e colocou-se em LB/Ampicilina Overnight a 30ºC Rejuvenesceu-se (1/10 em LB/Ampicilina) 2h30 Adicionou-se IPTG Aguardou-se 4h para expressão das proteínas

12 O IPTG é um indutor da transcrição genética que aumenta a quantidade da enzima T7 RNA polimerase, a qual se liga ao promotor T7, iniciando a transcrição do cDNA de interesse. Para cada conjunto de bactérias transformadas realizou-se um controlo e variou-se a concentração deste indutor, a fim de conhecer a concentração ideal a adicionar.

13 Sedimentou-se por centrifugação
Aspirou-se o sobrenadante Colocou-se o pellet em gelo Nonidet P40 Mg2+ PBS DNAse Adicionou-se uma mistura de lise Obteve-se um extracto de proteínas SDS-PAGE Corou-se com Azul de Coomassie

14 SDS-PAGE com amostras do extracto proteico da E
SDS-PAGE com amostras do extracto proteico da E. Coli transformada com o plasmídeo PRSETA (cDNA de His-Drg11) Clone Clone 2 IPTG(mM) , ,5 0 KDa 200 116 97 66 45 31 21 Uma banda de peso molecular de cerca de 100 KDa foi induzida. Pode representar a T7 RNA Polimerase. Na zona de peso molecular esperado (31 KDa) encontrou-se uma banda de 26 KDa .

15 SDS-PAGE com amostras do extracto proteico da E
SDS-PAGE com amostras do extracto proteico da E. Coli transformada com o plasmídeo PGEX (cDNA de GST-Drg11) Clone Clone 1 IPTG(mM) , , KDa 200 116 97 66 45 31 21 Não se observou nenhuma banda de 56 KDa. Provavelmente não ocorreu indução.

16 Aplicou-se a técnica imunoblotting:
Aparentemente não houve indução da transcrição do cDNA responsável pela produção da GST-Drg11, no entanto parece ter havido expressão da His-Drg11. Para confirmar estas possibilidades: Aplicou-se a técnica imunoblotting: Repetiu-se o SDS-PAGE; Fez-se um Western blotting; Incubou-se com o anticorpo anti-Drg11 disponível.

17 Membrana de nitrocelulose do plasmídeo PRSETA (cDNA de His-Drg11)
Clone Clone 3 , , IPTG(mM) KDa 200 – 116 – 97 – 66 – 45 – 31 – 21 –

18 Membrana de nitrocelulose do plasmídeo PGEX (cDNA de GST-Drg11)
Clone Clone 2 , , IPTG(mM) KDa 200 – 116 – 97 – 66 – 45 – 31 – 21 –

19 Com bases nos resultados obtidos, conclui-se que não ocorreu a expressão das proteínas His-Drg11 e GST-Drg11.

20 Razões para a falta de expressão da Drg11
Condições de indução: Concentrações de IPTG insuficientes; Temperatura e tempo de indução inadequados. As proteínas a obter podem ter tido um efeito tóxico nas bactérias utilizadas. Reconhecimento destas proteínas como sendo estranhas pelas bactérias e, consequente, proteólise das mesmas.

21 Sugestões para trabalhos futuros
Selecção de outra estirpe de E. Coli; Utilização de um meio de cultura diferente; Variação das condições de indução; Fazer nova transformação bacteriana; Tentativa de expressão destas proteínas por formas truncadas.

22 Bibliografia Alberts B, Jonhson A; Lewis J; Raff M; Roberts K; Walter P. Molecular Biology of the Cell. 4ª edição, Garland Science, 2000. Cooper, GM. The cell, a molecular approach. 2ª edição, Sinauer Associates, Inc., 2000.

23 Agradecimentos Serviço de Histologia e Embriologia Abel Salazar pelo espaço e material disponibilizado; Professor Doutor Carlos Reguenga pela orientação facultada ao longo do trabalho; Professora Doutora Deolinda Lima pela oportunidade de realizar um trabalho laboratorial.