24/04/2017 Narcizo Antonio Tonet LÍQUIDO SINOVIAL.

Apresentação em tema: "24/04/2017 Narcizo Antonio Tonet LÍQUIDO SINOVIAL."— Transcrição da apresentação:

1 24/04/2017 Narcizo Antonio Tonet LÍQUIDO SINOVIAL

2 LOCALIZAÇÃO CAVIDADES ARTICULARES BAINHAS DOS TENDÕES

3 Articulação sinovial

4 24/04/2017 FORMAÇÃO e FUNÇÃO

5 DEFINIÇÃO Dialisado (ultrafiltrado) do plasma que apresenta na sua constituição quase todos os constituintes séricos mais o hialuronato produzido pelos sinoviócitos. Tem a coloração amarela pálida, é límpido, não apresenta cristais, altamente viscoso e não coagula espontaneamente.

6 COMPOSIÇÃO Volume: 0,1 a 3,5 ml. Proteínas: 1,2 a 2,5 g/dl.
ausência de proteínas de alto peso molecular. Ácido hialurônico: 1,7 a 4,0 mg/l. Ácido úrico: 2,5 a 7,2 mg/dl. Glicose: 10% da glicemia. Lipídeos: 30% do plasmático.

7 COLETA ARTROCENTESE - joelhos (possui +/- 3,5 ml mas pode aumentar nos distúrbios articulares) 3 TUBOS: 1) ESTÉRIL - microbiologia e cristais 2) EDTA LÍQUIDO – citologia 3) SEM ANTICOAGULANTE OU HEPARINA - imunologia e bioquímica

8 FINALIDADE V classes de acordo com a etiologia: I – Não inflamatório
II – Inflamatório III – Sépticos IV – Provocados pela formação de cristais V- Hemorrágicos

9 ANÁLISE DO LÍQUIDO SINOVIAL
EXAME FÍSICO - Cor, aspecto, pH, viscosidade, coágulo de fibrina e pesquisa de cristais. EXAME CITOLÓGICO – Leucometria, Hematimetria, exame diferencial. EXAME BIOQUÍMICO – Glicose, Proteínas totais, lactato e ácido úrico. EXAME MICROBIOLÓGICO – Cultura e bacterioscopia. EXAME IMUNOLÓGICO – Contra-imunoeletroforese e imunodifusão radial simples.

10 COR Normalmente é amarelo palha. Amarelo nas inflamações
Amarelo esverdeado nas infecções Vermelho nas hemorragias* ASPECTO Normalmente transparente. Importância. Ligeiramente turvo, turvo e leitoso nas inflamações e infecções. *Diferenciar hemorragia de trauma de punção (como LCR)

11 COÁGULO DE FIBRINA Normalmente o líquido sinovial não coagula, mas nos distúrbios articulares pode conter fibrinogênio e formar coágulos. Gravidade do distúrbio. Cruzes: +++ coágulo com ¾ do volume ++ coágulo com ½ do volume + coágulo com ¼ do volume e leva horas para se formar.

12 VISCOSIDADE Normalmente é altamente viscoso.
Ácido hialurônico – polimerização. Artrites (diminuída). Metodologia: mais simples mais empregado (teste de Ropes ou coágulo de mucina)

13 VISCOSIDADE Teste de Ropes ou coágulo de mucina:
10 ml ácido acético de 2 a 5 % + Algumas gotas do líquido sinovial. ↓ Observar a formação de coágulo Bom  coágulo sólido circundado por líquido transparente. Regular  coágulo mole Pobre  coágulo friável Ruim  ausência de coágulo, líquido turvo

14

15 PH Normalmente na faixa de 7,3 a 7,8
Formação de cristais de fosfato de cálcio. Infecções. Métodos: potenciômetros específicos ou papel indicador de pH específico.

16 PESQUISA DE CRISTAIS Não refrigerar a amostra.
Sem coloração e com coloração. Luz polarizada. Artrite induzida por cristais. Mais comuns: Urato monossódico (ácido úrico)  gota Pirofosfato de cálcio  pseudogota Apatita (mineral das cartilagens)  gota apatita Corticosteróides  injeções

17 PESQUISA DE CRISTAIS

18 LUZ POLARIZADA DIAGNOSTICO DE ARTRITES POR GOTA
URATOS MONOSSÓDICO - GOTAÚRICA PIROFOSFATO DE CALCIO - PSEUDOGOTA APATITA - GOTA APATITA OXALATO DE CALCIO - GOTA OXALATO LIPÍDEOS - GOTA LIPÍDEOS

19

20 EXAME CITOLÓGICO Executar dentro de 1 h.
24/04/2017 EXAME CITOLÓGICO Executar dentro de 1 h. 1 gota de hialuronidase a 0,05% em tampão fosfato / ml de líq. sinovial; 37°C por 5 min. CONTAGEM GLOBAL DE LEUCOCITOS e HEMACIAS Contar em câmara de Neubauer da mesma forma que para LCR. VR: Leucócitos 0 a 200 mm³ e hemácias 0 a 2000 mm³

21 EXAME CITOLÓGICO CONTAGEM DIFERENCIAL DE LEUCÓCITOS
24/04/2017 EXAME CITOLÓGICO CONTAGEM DIFERENCIAL DE LEUCÓCITOS Esfregaço fino corado Citocentrifugada VR: neutrófilos 0 a 25%. mononucleares 75%. Significado clínico: Aumento de neutrófilos - indício de infecção. Linfócitos aumentados – indício de inflamação não bacteriana. CÉLULAS ESPECIAIS Guardam relação com o tipo de artrite.

22 24/04/2017 CÉLULAS ESPECIAIS

23 EXAMES BIOQUÍMICOS Glicose
Coleta de sangue simultânea. Metodologia = glicemia. VR: 10% menor que a glicemia (para coleta em jejum). Significado clínico: valores muito baixos há indício de distúrbios inflamatórios (grupo II) ou bacterianos (grupo III).

24 EXAMES BIOQUÍMICOS Proteínas totais
Contribuição Metodologia = LCR (sulfossalicílico), deve-se diluir o fluido 1/20 ou por método para proteínas séricas. VR: inferior 3 g/dl.. Níveis elevados nos distúrbios inflamatórios e hemorrágicos.

25 EXAMES BIOQUÍMICOS Ácido úrico
Metodologia = plasma Níveis elevados na gota. Útil principalmente nos casos onde os cristais não podiam ser evidenciados.

26 EXAMES BIOQUÍMICOS Lactato
Diagnóstico rápido - artrite inflamatória / artrite séptica. Metodologia do kit utilizado. Abaixo de 7,5 mmol/l – 98% chance de não ser artrite séptica. Acima de 7,5 mmol/l – grande probabilidade de artrite bacteriana mas pode ser artrite reumatóide.

27 EXAMES IMUNOLÓGICOS Líquido sinovial - casos de difícil diagnóstico.
Principais: pesquisa de antígenos bacterianos por contraimunoeletroforese e a dosagem de complemento por imunodifusão radial. Ex: CH5O no LES (diminuído no soro e fluído), AR (baixo no fluído e normal ou alto no soro), Reiter (maior nível no fluído que no soro). FR - 60% das artrites reumatóides.

28 EXAMES MICROBIOLÓGICOS
= LCR Cultura de anaeróbios. Meios específicos para BAAR, fungos, vírus. Centrifugar a 5000 rpm / 15 min. Usar sedimento. Cultura e bacterioscopia. Germes mais comuns: estáfilo, estrepto, Hemófilos e Neisserias.

29 TÉCNICA Para caso de coleta em tubo único:
1) Homogeneizar a amostra, observar os caracteres físicos (cor, aspecto e volume). 2) Separar (assepticamente) deixando uma pequena amostra para citologia (contagem global) e passando o restante para tubo estéril; 3) Centrifugar o tubo por 10 min a 3000 rpm; 4) Separar assepticamente o sobrenadante: No sedimento fazer bacterioscopia, cultura e diferencial e pesquisa de cristais; No sobrenadante fazer os exames bioquímicos, imunológico e teste da mucina.

30 TÉCNICA OBS: se a amostra apresentar coagulação a análise em tubo único fica prejudicada. Deve-se colher conforme preconizado (3 tubos).

31

32